(19)中华人民共和国国家知识产权局
(12)发明专利申请
(10)申请公布号 CN 112359141 A(43)申请公布日 2021.02.12
(21)申请号 202011229017.6(22)申请日 2020.11.06
(71)申请人 苏州药明检测检验有限责任公司
地址 215104 江苏省苏州市吴中经济开发
区吴中大道北侧(72)发明人 秦冲 李欣喜 陈源源 汪景长
童涌 (74)专利代理机构 上海浦一知识产权代理有限
公司 31211
代理人 郑权(51)Int.Cl.
C12Q 1/70(2006.01)C12Q 1/02(2006.01)C12R 1/93(2006.01)
权利要求书1页 说明书5页 附图3页
(54)发明名称
一种利用空斑染色测定伪狂犬病毒滴度的方法
(57)摘要
本发明公开一种利用空斑染色测定伪狂犬
以CV‑1细胞作为检测伪狂犬病病毒滴度的方法，
毒的指示细胞，利用结晶紫染色并读取病毒空斑数目，根据空斑数目结合对应的稀释倍数计算伪狂犬病毒的滴度。本发明中的指示细胞与伪狂犬病毒有高度敏感性，能产生易于观察的病毒空斑，且病毒滴度与产生的空斑数目呈良好线性关系，稳定性、重现性好，灵敏度高，适用于病毒的清除/灭活验证研究。
CN 112359141 ACN 112359141 A
权 利 要 求 书
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1.一种利用空斑染色测定伪狂犬病毒滴度的方法，其特征在于：以CV-1细胞作为检测伪狂犬病毒的指示细胞，利用结晶紫染色并读取病毒空斑数目，根据空斑数目结合对应的稀释倍数计算伪狂犬病毒的滴度。
2.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述方法包括：
(1)将CV-1细胞接种于含细胞培养基的细胞培养六孔板中，至细胞汇合度为90％-100％；
(2)用制备好的多个不同稀释度的伪狂犬病毒去感染CV-1细胞；将接种病毒的细胞培养孔板转移入细胞培养箱中孵育，孵育后的细胞培养孔板取出并弃去病毒液，再添加细胞培养基-琼脂混合物，待覆盖在细胞表面的细胞培养基-琼脂混合物完全凝固后，将细胞培养板转移至细胞培养箱中培养3天；
(3)待细胞出现明显的空斑后，终止培养；对细胞进行固定，再加入染色液对细胞进行染色、洗净，晾干细胞培养孔板，并观察空斑形态，读取每孔的病毒空斑数目，计算病毒滴度。
3.如权利要求2所述的方法，其特征在于，步骤(1)中，每个培养孔接种1.0×105～3.0×105个细胞。
4.如权利要求2所述的方法，其特征在于，步骤(2)中，对病毒的稀释根据实际情况作10倍、3.2倍、或2.5倍进行系列稀释。
5.如权利要求2所述的方法，其特征在于，步骤(2)中，每个培养孔中加入相同体积的接种量，每个稀释度病毒液做3个复孔。
6.如权利要求2所述的方法，其特征在于，步骤(2)中，将接种病毒的细胞板立即转移入细胞培养箱中，进行孵育；孵育期间每15至30分钟，轻轻晃动细胞板，使病毒液充分覆盖培养孔内所有细胞。
7.如权利要求2所述的方法，其特征在于，步骤(2)中，将孵育后的细胞培养孔板取出，弃去病毒液，在每孔中加入2.0mL预先准备好的细胞培养基-琼脂混合物，在室温下放置10至30分钟，直至覆盖在细胞表面的培养基-琼脂混合物完全凝固。
8.如权利要求2所述的方法，其特征在于，步骤(3)中，细胞染色前，在每孔细胞中加入适量固定试剂，使其充分覆盖细胞培养孔，固定细胞至少一小时，将细胞板底部的细胞固定；较佳的，所述固定试剂为多聚甲醛固定试剂。
9.如权利要求2所述的方法，其特征在于，步骤(3)中，固定完成后，去除细胞表面的固体琼脂，在细胞中加入适量染色液对细胞进行染色；染色1-2分钟后，弃去染色液，用清水洗净细胞；较佳的，所述染色液为0.5％结晶紫溶液。
10.如权利要求2所述的方法，其特征在于，本发明所涉及到的试剂溶液配方如下：步骤(1)中，所述细胞培养基为DMEM完全培养基；步骤(2)中，伪狂犬病毒的稀释液为HEPES buffered EMEM；步骤(2)中，所述细胞培养基-琼脂混合物的配方为：2×细胞培养基，1％低熔点琼脂糖。
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说 明 书
一种利用空斑染色测定伪狂犬病毒滴度的方法
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技术领域
[0001]本发明涉及生物技术领域，特别是涉及一种用于病毒清除/灭活验证研究的指示病毒-伪狂犬病毒(Pseudorabies virus,PrV)滴度的精确测定。背景技术
[0002]全人源单克隆抗体技术中有一种是单个B细胞抗备技术，主要是EB病毒(Epstein-Barr virus)转化B细胞技术，是利用EB病毒在体外能感染正常的B细胞，使之变成永生化的淋巴细胞系的原理，制备分泌人单抗的杂交瘤细胞，因此应确认此类产品生产工艺能否清除/灭活疱疹病毒。生物技术产品的病毒安全性评价指导原则ICH Q5(A)中对病毒清除/灭活研究中病毒的选择提出要求，病毒指示病毒进行定义：“相关”病毒与“模型”病毒。伪狂犬病毒是与EB病毒密切相关的病毒(同属)，因此可作为疱疹病毒清除/灭活研究的特异性“模型病毒”。[0003]伪狂犬病毒(Pseudorabies Virus，PrV)也称之为Suid疱疹病毒1型，属于疱疹病毒科α-疱疹病毒亚科。PrV是双链DNA包膜病毒，在自然条件下，能够感染猪、牛、犬、鼠等哺乳动物。PrV致病性强，感染性也强，并且死亡率高。猪(包括家猪和野猪)通常是这一病毒的贮存宿主，目前没有证据表明人类可被感染。PrV在pH 4-12范围内保持稳定性，可在低温下保持感染性数周，但不耐高温；PrV易受消毒剂的影响，邻苯酚酚盐化合物，过氧乙酸，，2％氢氧化钠，碘化磷酸三钠消毒剂，1-2％季铵化合物，次氯酸盐(漂白剂)和洗必泰均可使其失活。
[0004]PrV的体外测定方法多为酶联免疫吸附测定(ELISA)来检测病毒的抗原表位或待检样品的抗体水平，或实时荧光定量PCR来测定样品中病毒特异性核酸片段。这些方法开发多用于服务养殖业，尤其是养猪场伪狂犬病毒的快速鉴定，其目的并不是准确测定病毒的滴度，因此并不适用于病毒清除/灭活研究。[0005]通过对中英文专利的检索，并没发现明确地应用空斑检测法测定PrV病毒滴度的专利。因此急需开发出一种有效的测定PrV病毒滴度的方法，使之适用于病毒的清除/灭活验证研究。[0006]病毒清除/灭活研究是要验证客户生物制品纯化工艺中清除/灭活有感染活力的病毒的能力，而不是病毒的总和，因此病毒清除/灭活研究中需要一种能够准确测定活病毒的量的方法，这样才能准确的评价各个纯化步骤对病毒清除/灭活的效果。[0007]本发明期望利用空斑染色准确测定有感染活力的PrV病毒，适用于病毒清除/灭活研究的需要。
[0008]空斑计数法准确定量测定PrV病毒滴度，需满足以下要求：PrV应对指示细胞具有高度敏感性，能够引起明显的细胞病变效应，并且能够在指示细胞上产生易于观察的病毒空斑；在一定的病毒滴度范围内，病毒的滴度与产生的空斑数目应呈良好的线性关系；测定结果应具有稳定性，不同时间、不同细胞批次、不同的操作者均不会影响实验结果，可重复性要好，检测灵敏度要高；该方法的各种参数，包括：线性标准曲线、线性相关系数、测定范
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说 明 书
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围、检测限、精密度、灵敏度等方面，都符合相关法规要求。
发明内容
[0009]现有技术中没有发现明确地应用空斑检测法测定伪狂犬病毒(Pseudorabies virus,PrV)滴度的方法。因此，本发明期望建立一种有效的测定PrV病毒滴度的方法，该方法中的指示细胞与PrV病毒有高度敏感性，能产生易于观察的病毒空斑，且病毒滴度与产生的空斑数目呈良好线性关系，稳定性、重现性好，灵敏度高，适用于病毒的清除/灭活验证研究。
[0010]为解决上述技术问题，本发明采用如下技术方案：
[0011]一种利用空斑染色测定伪狂犬病毒(PrV)滴度的方法，该方法以CV-1细胞作为检测伪狂犬病毒(PrV)的指示细胞，利用结晶紫染色并读取病毒空斑数目，根据空斑数目结合对应的稀释倍数计算伪狂犬病毒(PrV)的滴度。[0012]作为本发明优选的技术方案，该方法包括：[0013](1)将CV-1细胞接种于含细胞培养基的细胞培养孔板中，至细胞汇合度为90％-100％；[0014](2)用制备好的多个不同稀释度的伪狂犬病毒去感染CV-1细胞；将接种病毒的细胞培养孔板转移入细胞培养箱中孵育，孵育后的细胞培养孔板取出并弃去病毒液，再添加细胞培养基-琼脂混合物，待覆盖在细胞表面的细胞培养基-琼脂混合物完全凝固后，将细胞培养板转移至细胞培养箱中培养3天；[0015](3)待细胞出现明显的空斑后，终止培养；对细胞进行固定，再加入染色液对细胞进行染色、洗净，晾干细胞培养孔板，并观察空斑形态，读取每孔的病毒空斑数目，计算病毒滴度。
[0016]作为本发明优选的技术方案，步骤(1)中，每个培养孔接种1.0×105～3.0×105个细胞。亦可调整接种细胞的数目，使病毒接种时培养孔内细胞汇合度达到90-100％。[0017]作为本发明优选的技术方案，步骤(2)中，对病毒的稀释根据实际情况作10倍或其他合适倍数(常用倍数为3.2倍(0.5log)、2.5倍(0.4log))进行系列稀释。比如，对病毒进行连续10倍稀释至10-8稀释度。
[0018]作为本发明优选的技术方案，步骤(2)中，每个培养孔中加入相同体积的(0.5mL病毒液或其他合适体积)接种量，每个稀释度病毒液做3个复孔。[0019]作为本发明优选的技术方案，步骤(2)中，将接种病毒的细胞板立即转移入细胞培养箱中，进行孵育；孵育期间每15至30分钟，轻轻晃动细胞板，使病毒液充分覆盖培养孔内所有细胞。
[0020]作为本发明优选的技术方案，步骤(2)中，预先将细胞培养基和融化的琼脂糖按比例混合均匀，放置在37℃水浴中待用。[0021]作为本发明优选的技术方案，步骤(2)中，将孵育后的细胞培养孔板取出，弃去病毒液，在每孔中加入2.0mL预先准备好的细胞培养基-琼脂混合物，在室温下放置10至30分钟，直至覆盖在细胞表面的细胞培养基-琼脂混合物完全凝固。[0022]作为本发明优选的技术方案，步骤(3)中，细胞染色前，在每孔细胞中加入适量固定试剂，使其充分覆盖细胞培养孔，固定细胞至少一小时，将细胞板底部的细胞固定。
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作为本发明优选的技术方案，步骤(3)中，所述固定试剂为甲醛溶液。
[0024]作为本发明优选的技术方案，步骤(3)中，固定完成后，去除细胞表面的固体琼脂，在细胞中加入适量染色液对细胞进行染色；染色1-2分钟后，弃去染色液，用清水洗净细胞。[0025]作为本发明优选的技术方案，步骤(3)中，所述染色液为0.5％结晶紫溶液。[0026]作为本发明优选的技术方案，本发明所涉及到的试剂溶液配方如下：[0027]步骤(1)中，所述细胞培养基为DMEM完全培养基；[0028]步骤(2)中，伪狂犬病毒(PrV)的稀释液为HEPES buffered EMEM(HEPES终浓度0.25M)；
[0029]步骤(2)中，所述细胞培养基-琼脂混合物的配方为：2×细胞培养基，1％低熔点琼脂糖。其中，细胞培养基为DMEM完全培养基。
[0030]本发明中使用了非洲绿猴肾成纤维细胞作为指示PrV的指示细胞，以下称为CV-1细胞(该细胞系是商业化细胞系，可以从ATCC购买，货号为CCL-70，遗传背景清晰、细胞性状稳定、可连续传代)，用空斑测定法(plaque assay)准确定量测定PrV病毒的滴度，单位为PFU/mL(PFU定义为空斑形成单位)。PrV病毒感染CV-1细胞，CV-1细胞因病毒感染产生细胞病变效应(cytopathic effect,CPE)后形成病毒空斑。理论上一个有感染性的病毒颗粒侵染一个宿主细胞，病毒建立感染后以辐射状感染四周细胞，造成该区域细胞死亡，形成一个病毒空斑即一个PFU，根据空斑数目以及相应的稀释倍数即可得计算出病毒的滴度。[0031]本发明的有益效果包括：
[0032]1.指示细胞CV-1被PrV病毒感染后用固体琼脂细胞培养基进行培养，感染后的CV-1细胞，无论是显微镜下还是肉眼观察，均显示出明显的CPE(cytopathic effect)，染色后呈特定的空斑形态。
[0033]2.通过控制变量，验证PrV感染CV-1细胞的空斑测定的稳定性与可重复性，结果表明，在不同时间、不同细胞批次和不同操作人员的情况下，用该方法测定的PrV病毒滴度没有显著差异，绘制的标准曲线具有良好的线性关系，结果稳定性好，可重复性强。[0034]3.本方法的各种参数，包括：线性标准曲线、线性相关系数、测定范围、检测限、精密度、灵敏度等方面，符合相关法规要求，说明该方法能够应用于病毒清除/灭活研究中伪狂犬病毒滴度的测定。
[0035]4.本方法详细描述了以CV-1细胞作为指示细胞，PrV病毒的空斑测定方法，为其他需要用于病毒清除/灭活验证研究的机构提供了良好的参考依据，同时也为其他疱疹病毒的病毒滴度测定提供可借鉴的实验方法。
附图说明
[0036]图1是分别在同一天的不同时间和隔天进行PrV的空斑测定的标准曲线的线性关系。
[0037]图2是PrV病毒感染3个批次CV-1细胞的各批次的线性关系。
[0038]图3是对PrV感染3个批次CV-1细胞的空斑测定进行汇总并绘制标准曲线。[0039]图4是不同实验操作者Operator1和Operator2的PrV空斑测定的标准曲线。[0040]图5是CV-1细胞空斑测定PrV病毒滴度共完成5个Run并绘制标准曲线。
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具体实施方式
[0041]下面将对本发明的技术方案进行清楚、完整的描述，显然，所描述的实施例是本发明的一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有做出创造性劳动的前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。[0042]实施例一：同一操作人员在不同时间进行PrV病毒感染CV-1细胞实验的比较[0043]将PrV病毒解冻后，经超声和过滤处理后用病毒稀释液对病毒进行系列稀释，根据实际情况做10倍系列稀释。
[0044]将CV-1细胞接种于细胞培养六孔板中，每个细胞孔接种2.0×105个细胞，在37℃，5％CO2培养条件下进行细胞培养，第二天观察细胞，至细胞汇合度为90％-100％可进行后续操作。亦可调整接种细胞的数目，使细胞汇合度在90％-100％左右。[0045]对病毒进行连续10倍稀释至10-8稀释度，将制备好的不同稀释度的PrV病毒去感染CV-1细胞：吸去细胞培养基，每个细胞孔中加入0.5mL病毒液，每个稀释度病毒液做3个复孔。将接种病毒的细胞板立即转移入细胞培养箱中，进行孵育。期间，每15至30分钟，轻轻晃动细胞板，使病毒液充分覆盖培养孔内所有细胞。同时，将细胞培养基和融化的琼脂糖按比例混合均匀，放置在37℃水浴中待用。将孵育后的细胞培养六孔板取出，弃去病毒液，在每孔中加入2.0mL事先准备好的培养基-琼脂混合物，在室温下放置10至30分钟，直至覆盖在细胞表面的培养基-琼脂混合物完全凝固。凝固后将细胞培养板转移至细胞培养箱中，培养3天。
[0046]待细胞出现明显的空斑后，终止培养，在每孔细胞中加入适量多聚甲醛固定试剂，使其充分覆盖细胞培养孔。多聚甲醛能够从培养基-琼脂糖凝胶的表面往下渗透，将细胞板底部的细胞固定。固定细胞至少一小时，随后轻轻去除细胞表面的固体琼脂，在细胞中加入适量0.5％结晶紫溶液对细胞进行染色。染色1-2分钟后，弃去结晶紫溶液，用清水洗净细胞。在通风橱中晾干细胞培养六孔板，并在白光透射仪下观察空斑形态：指示细胞CV-1被PrV病毒感染后用固体琼脂细胞培养基进行培养，感染后的CV-1细胞无论是显微镜下还是肉眼观察均显示出明显的CPE(cytopathic effect)，结晶紫染色后呈特定的空斑形态。读取每孔的病毒空斑数目，计算病毒滴度。
[0047]同一位实验人员分别在同一天的不同时间和隔天进行PrV的空斑测定实验，每次实验做三组重复，每组做三个复孔，实验结果如图1所示。实验结果：三个时间点的PrV病毒感染CV-1细胞的标准曲线线性关系良好。[0048]实施例二：PrV病毒感染3个不同批次CV-1细胞的比较[0049]同一批次PrV病毒感染3个不同批次的CV-1细胞，每个批次细胞做三组重复，每组做三个复孔。空斑测定实验结果如图2和图3所示。由图2可知，3批次细胞之间没有显著差异，3条标准曲线的线性关系都很好，具有良好的重复性。图3中3组数据汇总后的标准曲线的线性关系好。[0050]实施例三：不同实验操作者的比较[0051]两位实验操作者Operator 1和Operator 2进行实验，每个操作者做三组重复，每组做三个复孔实验结果如图4所示。由图4可知，Operator 1和Operator 2无显著差别，2条标准曲线重复性好。[0052]实施例四：PrV病毒滴度的统计分析
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两位实验操作人员Operator 1和Operator 2参与实验。共进行四轮实验，
Operator 1完成三轮实验，Operator 2完成一轮实验，对此四轮实验结果进行统计分析：绘制标准曲线、计算线性相关系数、确定病毒检测范围同时计算出精密度、检测限等相关数据。标准曲线和线性相关系数结果见图5，其他相关数据：[0054]Linearity：Coefficient of Determination,R2线性拟合计算得到：0.9997；[0055]Range：范围应在可计数的空斑数范围即在1PFU到TNTC(空斑数过多无法计数)之间；
[0056]Limit of Quantitation：c＝lnp/-v＝1.997PFU/mL；[0057]注：p:probability,v:volume of sample，本实验中：p≤0.05，v＝1.5mL(每孔0.5mL，共三个复孔)；[0058]Limit of Detection：所检测的最小数量为一个空斑即1PFU；[0059]Precision：不同Run的log10 Titer的平均值、标准偏差以及95％置信度进行统计分析对其精密度进行研究，见下表：[0060]表1批内精密度测试
[0061]
[0062]
表2批间精密度测试
[0063]
[00]
以上结果表明以CV-1细胞为指示细胞，用空斑测定实验测定PrV病毒滴度的方法，
符合FDA,ICH和USP相关GLP法规要求，能够用于病毒清除/灭活验证研究中。[0065]综上所述，上述各实施例仅为本发明的较佳实施例而已，并不用以限定本发明的保护范围，凡在本发明的精神和原则之内，所做的任何修改、等同替换、改进等，皆应包含在本发明的保护范围内。
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图4
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